本文主要介紹穩(wěn)定轉染的原理、步驟，穩(wěn)定轉染能夠得到穩(wěn)定高表達的細胞株，是滿足活性蛋白大量制備的方法。

利用哺乳動物系統(tǒng)生產(chǎn)蛋白的方式有兩種：瞬時轉染和穩(wěn)定轉染。使用哺乳動物細胞表達蛋白，細胞的選擇培養(yǎng)也不可忽視。常用的有中國倉鼠卵巢細胞（CHO）和人胚腎細胞（HEK293）。德泰生物主要培養(yǎng)HEK293用于哺乳動物細胞瞬時轉染，CHO細胞用于穩(wěn)定轉染。穩(wěn)定轉染通過穩(wěn)定細胞系構建篩選出能夠穩(wěn)定表達的細胞株。針對瞬時轉染，外源基因在短時間轉錄翻譯得到的蛋白量少，1mg質粒得到1mg蛋白，能夠滿足小量蛋白制備，大量生產(chǎn)成本很高。穩(wěn)定轉染的是將外源基因整合到細胞自身的基因組上，隨著細胞的生長分裂外源基因可以穩(wěn)定表達，同時經(jīng)過抗生素加壓篩選，終得到能夠穩(wěn)定表達蛋白的細胞株。

穩(wěn)定轉染過程

1.細胞復蘇

細胞復蘇是將保存在液氮或-80℃冰箱中的細胞株解凍并重新培養(yǎng)的過程。細胞復蘇的關鍵是快復，防止在解凍過程中，產(chǎn)生的水珠形成冰晶損傷細胞。細胞復蘇一般步驟如下：

1）預先加熱水浴鍋，溫度37-40℃，并在離心管中準備好10ml培養(yǎng)基

2）從液氮罐或冰箱中取出細胞，迅速放進預熱的水浴鍋中，鑷子夾住凍存管晃動，使其受熱均勻

3）當凍存管內(nèi)*融化時，注意用酒精擦拭凍存管消毒，將液體倒入含有10ml培養(yǎng)基的離心管中

4）離心5min，去除上清，得到沉淀

5）用培養(yǎng)基懸浮沉淀，并接種到培養(yǎng)瓶常規(guī)培養(yǎng)

細胞復蘇后，生長一段時間，95%的細胞貼壁生長，細胞狀態(tài)良好，說明細胞復蘇成功。

2.瞬時轉染

以Lipofectamine轉染試劑為例的操作流程，不同轉染試劑參考說明書

1）將復蘇后常規(guī)培養(yǎng)的細胞按照1-3x10^5接種到6孔板中，加入2-4ml的*培養(yǎng)基，混勻放置在二氧化碳培養(yǎng)箱中37℃過夜

2）無菌狀態(tài)下配置如下溶液：a 用100ul的無血清培養(yǎng)基稀釋2ug的待轉染的質粒

b 用100ul的無血清培養(yǎng)基稀釋25ul的Lipofectamine轉染試劑（血清的存在會影響轉染效率，因此要使用無血清培養(yǎng)基轉染）

3）將ab溶液混合并搖勻，室溫下放置30min左右

4）細胞培養(yǎng)80%單層左右，用無血清培養(yǎng)基洗滌細胞2次，每孔加入1ml的無血清培養(yǎng)基，并將混合后的ab溶液逐滴加入到每孔，按十字方向輕搖混勻，二氧化碳培養(yǎng)箱中37℃培養(yǎng)24小時

5）將轉染液倒出，換為*培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)

3.穩(wěn)定細胞系篩選

24-72h加入選擇性抗生素篩選穩(wěn)定細胞株，預實驗確定抗生素的濃度，確定抗生素對所選細胞的低作用濃度。

1）提前一天接種細胞與24孔板中，待第二天長成25%單層為宜，二氧化碳培養(yǎng)箱中37℃過夜培養(yǎng)。

2）第二天將培養(yǎng)液換成含抗生素的培養(yǎng)基，抗生素濃度按梯度遞增（0,50,100,200,400,800，1000ug/ml）。

3）培養(yǎng)15天左右絕大多數(shù)細胞死亡抗生素濃度為準，一般為400-800ug/ml，篩選細胞時刻適當提高濃度

4）二氧化碳培養(yǎng)箱中37℃培養(yǎng)72h后按照1:10的比例將轉染細胞傳代，使用預實驗得到的抗生素濃度的培養(yǎng)基培養(yǎng)。后挑選單克隆，有限稀釋法挑取單克隆。

 有限稀釋法：將細胞消化下來做連續(xù)的10倍稀釋，每稀釋一梯度都在9孔板中培養(yǎng)，生長一周左右再次挑取單克隆進行培養(yǎng)，如此反復3次。

5）Western blot或ELISA檢測蛋白的表達情況，挑取多個單克隆進行表達檢測，篩選出表達量的克隆傳代并保存。

終篩選出穩(wěn)定高表達目的基因的細胞株，相對于瞬時轉染穩(wěn)定細胞系構建節(jié)約大量的時間和成本，是滿足活性蛋白大量制備的方法。